top of page

생체 내 CAR-T에서 CAR-NK로: 전달이 면역 조절로 이어지는 순간

2시간 전
15분 분량
리간드 유도형 지질 나노입자를 이용한 생체 내 CAR-NK 유전자 조작
in vivo CAR는 T세포에서 NK세포로 확장되고 있으며, 전달에 쓰이는 수용체가 면역세포 기능에 영향을 줄 수도 있다. LuTra Studio

생체 내 CAR 연구의 첫 번째 물결은 제조와 관련된 질문을 던졌습니다. CAR-T 세포를 채취, 유전자 조작, 증식시킨 후 다시 주입하는 대신, 환자의 몸 안에서 직접 생성할 수 있을까?


그 질문은 여전히 중요합니다. 하지만 네이처 바이오테크놀로지 에 발표된 새로운 연구는 이 분야를 더욱 흥미로운 방향으로 이끌고 있습니다.


만약 CAR 공학 기술이 인체 내부로 이동한다면, 전달 시스템 또한 면역 세포의 기질을 선택하고 그 기능 상태를 조절할 수 있을까요?

첸과 그의 동료들은 CAR mRNA를 자연 살해 세포(NK 세포)에 선택적으로 전달하는 리간드 유도형 지질 나노입자를 설계했습니다. 그들이 개발한 최적의 NKG2D 표적 구조체는 높은 NK 세포 형질전환율을 보였으며, NKG2A 표적 구조체는 CAR 양성 세포 수는 더 적었음에도 불구하고 때때로 더 나은 성능을 나타냈습니다. 그 이유는 생물학적일 수 있습니다. NKG2A는 단순히 전달 경로일 뿐만 아니라 NK 세포 억제 수용체이기도 하므로, NKG2A를 활성화시키면 새로 발현된 CAR이 작용하는 면역 체크포인트 환경이 변화될 수 있습니다.


이 글은 LuTra Studio에서 이전에 다룬 임상 생체 내 CAR-T 및 비바이러스성 ERTLNP mRNA 전달 에 대한 내용을 이어갑니다. 하지만 이번 글의 초점은 이전과 다릅니다. 체외 제조 공정을 없애는 방법에 대한 개괄적인 설명이 아니라, 생체 내 CAR-NK 치료제 설계 문제를 심층적으로 분석합니다. CAR이 T세포를 넘어 다른 세포로 확장되는 이유, CAR 면역요법의 실제 작용 방식, 각 세포 유형에 적합한 질환, 그리고 이 논문이 보여주는 것과 보여주지 못하는 것들을 살펴봅니다.


생체 내 CAR-NK: 주요 결과


  • 본 연구는 NKG2D 및 NKG2A 표적 LNP를 사용하여 생쥐 및 인간화 생쥐 모델에서 CAR mRNA를 NK 세포로 전달합니다. 이는 전임상 개념 증명이며, 환자에게서의 효능을 입증하는 것은 아닙니다.

  • NKG2D를 표적으로 하는 LNP는 더 높은 NK 세포 형질전환율을 나타냈으며, NKG2A를 표적으로 하는 전달은 Qa-1b/HLA-E가 풍부한 환경에서 면역 체크포인트 신호 전달에도 영향을 미칠 수 있다.

  • CAR을 T 세포에서 NK 세포, 대식세포 또는 조절 T 세포로 옮기는 것은 단순히 CAR-T를 대체하려는 시도가 아니라, 서로 다른 세포 골격을 서로 다른 면역 기능에 맞추는 것입니다.

  • NK 세포 선택적 비바이러스성 생체 내 CAR-NK 세포 치료법은 아직 인체 임상 시험 단계에 진입하지 않았습니다. INT2104는 생체 내에서 CAR-T 세포와 CAR-NK 세포를 모두 생성할 수 있지만, NK 세포 선택적 플랫폼은 아닙니다.


CAR 치료법이 T세포에서 시작된 이유는 무엇일까요?


키메라 항원 수용체(CAR)는 특정 표면 항원을 향해 면역 세포를 유도하는 합성 수용체입니다. CAR-T 치료법이 최초로 성공적인 형태로 자리 잡은 이유는 T 세포가 이미 강력한 세포독성, 항원 유도 증식, 기억 형성 능력, 그리고 배양, 유전자 전달 및 임상 제조 방법의 성숙한 기반과 같은 여러 유용한 특성을 가지고 있었기 때문입니다.


CD19는 또한 매우 유리한 출발점을 제공했습니다. CD19는 여러 B세포 악성종양에서 광범위하게 발현되는 반면, 정상 B세포의 파괴는 임상적으로 모니터링 및 관리할 수 있습니다. 이러한 조합 덕분에 CAR-T는 특정 백혈병 및 림프종에서 지속적인 효능을 확립할 수 있었고, 이후 BCMA 양성 다발성 골수종으로 치료 범위를 확대했습니다.


하지만 이러한 성공은 T세포 기반 시스템의 한계점도 드러냈습니다.


대부분의 고형 종양은 유전자 조작 T 세포가 종양 조직으로 이동하고, 기질에 침투하고, 저산소증 및 영양 결핍을 견뎌내고, 억제 신호에 저항하고, 항원 이질성에 대처해야 하므로 여전히 치료가 어렵습니다. 강력한 증식과 지속성은 사이토카인 방출 증후군, 신경 독성 및 장기적인 표적 효과를 유발할 수도 있습니다. 동종 이식의 경우, 기존의 알파-베타 T 세포 생물학은 이식편대숙주병, 숙주 거부 반응 및 추가적인 유전자 조작의 필요성과 관련된 추가적인 문제점을 야기합니다.


더욱 근본적으로, 질병마다 필요한 면역 반응은 다릅니다. 순환하는 B세포를 사멸시키는 것, 고형 종양 기질에 침투하는 것, 병원성 T세포 집단을 제거하는 것, 그리고 항원 특이적 면역 관용을 회복시키는 것은 모두 동일한 임무가 아닙니다. 따라서 CAR을 NK세포, 대식세포, 감마-델타 T세포, NKT세포 또는 조절 T세포로 옮기는 것은 CAR-T 치료법을 대체하려는 경쟁이 아닙니다. 이는 수용체 특이성을 가장 적합한 세포의 고유한 기능과 일치시키려는 시도입니다.


CAR-T, CAR-NK, CAR-대식세포 및 CAR-Treg 세포 섀시 비교
각 CAR 세포 섀시는 서로 다른 고유 면역 기능을 제공하며 각기 다른 치료 목적에 적합하다. LuTra Studio

셀 섀시

원주민의 이점

잠재적 적합성

주요 개발 과제

알파-베타 T 세포

강력한 세포독성, 증식 능력 및 기억력; 풍부한 임상 경험

B세포 악성종양, 다발성 골수종 및 새롭게 대두되는 자가면역 질환

CRS/ICANS, 고형 종양의 소진 및 유통, 동종 이식 적합성

NK 세포

CAR 의존성 및 선천적 면역 사멸; 고전적인 HLA 일치에 대한 의존도가 낮음; 일반적으로 면역 반응 지속 기간이 짧음

T세포 악성종양, 신속한 면역 재설정 및 잠재적으로 즉시 사용 가능한 치료법

지속성 제한, 비바이러스성 엔지니어링의 어려움, 억제적인 미세환경

대식세포/단핵구

종양 침윤, 식세포 작용, 항원 제시 및 기질 재형성

접근성과 미세환경 재구성이 중요한 고형 종양

표현형 가소성, 확장 가능한 제조, 염증 안전성

감마-델타 T 세포 또는 NKT 세포

선천성 면역과 유사한 인식, 세포 독성 및 기존 HLA 제한에 대한 의존도 감소

동종 이식 제품 및 특정 혈액 또는 고형 종양

인구 이질성, 확장 기준, 제한적인 임상 증거

조절 T 세포

국소 면역 억제 및 조직 내성 유도 (살상보다는)

자가면역 질환, 장기 이식 및 이식편대숙주병

표현형 안정성, 지속성 및 과도한 면역억제 위험


CAR 면역요법의 작동 원리


기존의 T세포 수용체는 HLA/MHC 분자에 의해 제시되는 펩타이드를 인식합니다. 반면, CAR(키메라 항원 수용체)은 항체 유래 결합 도메인을 이용하여 표적 세포 표면의 항원을 직접 인식합니다. 이는 고전적인 항원 제시 과정을 우회하지만, 다음과 같은 엄격한 제약을 수반합니다. 즉, 표적은 세포막에 위치해야 하며, 질병 조직과 필수 정상 조직 사이에서 충분한 발현 간격을 제공해야 합니다.


CAR 응답은 서로 연결된 네 단계로 이해할 수 있습니다.


  1. 인식 및 접촉. 단일 사슬 가변 단편 또는 다른 결합 도메인이 표적 항원과 결합합니다. 항원 밀도, 친화도, 에피토프 위치 및 힌지 길이는 면역 세포가 효과적인 시냅스를 형성할 수 있는지 여부에 영향을 미칩니다.

  2. 신호 개시. 항원 결합은 세포 내 신호 전달 도메인을 클러스터링합니다. 1세대 CAR은 주로 CD3-제타를 사용했으며, 2세대 설계에는 CD28 또는 4-1BB와 같은 보조 자극 도메인이 하나 추가되었습니다. 이후의 구조는 보조 자극, 사이토카인 지원, 면역 체크포인트 저항성, 논리 게이트 또는 안전 스위치를 결합할 수 있습니다. 새로운 세대 번호가 자동으로 더 나은 치료법을 의미하는 것은 아니며, 신호가 세포와 적응증에 적합해야 합니다.

  3. 효과기능. 활성화된 CAR-T 세포 또는 CAR-NK 세포는 퍼포린과 그랜자임을 방출하고, 표적 세포 사멸을 유도하며, 사이토카인을 분비하고, 더 광범위한 면역 반응을 활성화합니다. NK 세포는 추가적인 활성화 및 억제 수용체를 보유하고 있으므로, 그 활성은 CAR에만 국한되지 않습니다.

  4. 확장, 지속 또는 중단. 통합 벡터는 장기간 지속되는 CAR 발현 및 면역 감시를 지원할 수 있습니다. 메신저 RNA는 분해되므로 발현이 일시적이며 제어가 더 쉬울 수 있지만, 반복 투여가 필요한 경우가 많습니다.


따라서 임상 표현형은 항원만으로 결정되는 것이 아닙니다. 표적, 수용체 구조, 세포 골격, 발현 기간, 전달 경로 및 질병 미세환경 등 여러 요인에 의해 나타납니다.


6가지 설계 제어를 통해 CAR 구조체를 의약품으로 만들 수 있습니다.


디자인 레이어

개발 문제

무슨 문제가 생길 수 있을까요?

표적 항원

지표면에서 접근 가능하고, 충분히 풍부하며, 허용 가능한 수준으로 제한되어 있습니까?

항원 회피 또는 표적/비종양 손상

결합 도메인 및 힌지

친화도, 에피토프 기하학적 구조 및 간격이 효과적인 시냅스 형성에 기여하는가?

활동 저하, 긴장성 신호 전달, 탈진 또는 의도치 않은 인식

세포 내 신호 전달

이 세포 섀시에 적합한 활성화 및 보조 자극 모듈은 무엇입니까?

불충분한 활성화 또는 과도한 사이토카인 신호 전달 및 기능 장애

셀 섀시

세포의 본래 행동이 질병 발생 과정과 일치하는가?

세포가 목표 지점에 도달했지만 잘못된 면역 기능을 수행했습니다.

페이로드 및 지속성

사이토카인 지원이 필요한가요? 발현은 일시적이어야 할까요, 통합적이어야 할까요, 아니면 전환 가능해야 할까요?

치료 지속 기간 부족 또는 중단하기 어려운 독성으로 인한 조기 재발

배송 및 생물학적 유통

어떤 세포와 장기가 약물을 받아들이며, 치료는 반복 가능한가?

의도하지 않은 세포에서의 CAR 발현, 조직 축적 또는 재투여 활성 손실


새로운 NK 세포 표적형 LNP 플랫폼은 이러한 여러 제어 기능을 하나의 주사로 구현합니다. 이 입자는 먼저 NK 세포 수용체에 결합하여 세포 내로 들어갑니다. 그 mRNA는 세포질에 도달하여 CAR로 번역되고, 이 CAR는 세포 표면에 일시적으로 나타납니다. 그런 다음, CAR는 탑재된 물질에 따라 CD19, CD3 또는 CD7을 표적으로 삼아 세포 사멸을 유도합니다.


핵심적인 진전은 전달 수용체가 유전자 조작된 NK 세포의 생물학적 특성에도 영향을 미칠 수 있다는 점입니다.


NK 세포에서 표적 LNP 전달 및 일시적 CAR 발현의 4단계 메커니즘
표적 LNP가 NK세포에 들어가 CAR mRNA를 방출하고 일시적 발현을 일으켜 세포 독성을 재지향한다. 개념적 기전도. LuTra Studio

NK 세포가 차세대 핵심 세포로 주목받는 이유


NK 세포는 이미 활성화 및 억제 신호를 통합하여 스트레스 상태이거나 비정상적인 세포를 감지합니다. CAR은 이러한 선천적 인식 네트워크를 제거하지 않고 항원 특이성을 추가합니다. 원칙적으로 이는 CAR-NK 세포가 이질적인 표적을 감지할 수 있는 여러 경로를 제공합니다.


상대적으로 수명이 짧은 이들의 효과기 반응은 일시적인 mRNA 발현과 자연스럽게 연관될 수 있습니다. 면역 재설정 전략의 경우, 무기한 CAR 지속보다는 강력하지만 가역적인 치료 기간이 더 바람직할 수 있습니다. 그러나 지속적인 종양 감시가 필요한 경우에는 이러한 특징이 오히려 단점이 될 수 있습니다.


T세포 악성종양은 또 다른 강력한 근거를 제시합니다. 기존의 CAR-T 치료법으로 CD3, CD5 또는 CD7과 같은 T계열 항원을 표적화할 경우, 치료 세포 자체가 표적 항원을 발현할 수 있기 때문에 자가살해가 발생할 수 있습니다. NK 세포는 항원이 NK 세포에 존재하지 않을 때, 예를 들어 CD3의 경우, 이러한 문제를 가장 명확하게 피할 수 있습니다. 하지만 이러한 장점이 모든 경우에 적용되는 것은 아닙니다. 인간 NK 세포 아형은 CD7을 발현할 수 있으므로, 항-CD7 CAR-NK 세포 개발에는 여전히 아형 구성, 활성화 상태 및 자가살해 위험에 대한 신중한 평가가 필요할 수 있습니다.


NK 세포를 조작하는 것은 쉽지 않습니다. NK 세포는 일반적으로 T 세포보다 비바이러스성 전달에 대한 감수성이 낮고 강력한 항바이러스 감지 기능을 가지고 있습니다. 따라서 유용한 플랫폼은 목표로 하는 효과기능을 손상시키지 않으면서 충분한 양의 약물을 전달해야 합니다.


연구 설계 방식


연구팀은 NKG2A, NKG2D, KLRG1 및 NKp46에 대한 24개의 NK 표적 리간드를 제작했습니다. 이 중 8개는 단일가 리간드, 4개는 이중특이성 리간드, 12개는 이중특이성 리간드입니다. 나노입자는 이온화 가능한 지질인 SM-102를 사용했으며, 소르타제 A는 단일 사슬 항체 단편을 입자 표면에 부위 특이적으로 부착할 수 있도록 했습니다.


화면에서 두 개의 이항 구조가 나타났습니다.


  • BiNKG2D-LNP는 높은 NK 세포 형질전환율을 보였습니다. 마우스 검증 실험에서 일부 혈액 및 조직 구획에서 NK 세포 형질전환율이 80%에 육박했습니다.

  • BiNKG2A-LNP는 여러 환경에서 낮은 형질전환 효율(보고된 검증 용량에서 약 60%)을 보였지만, NKG2A 리간드 억제 생물학이 중요한 경우에는 더 나은 성능을 나타낼 수 있었습니다.


두 경우 모두 비표적 대조군에 비해 NK 세포에 대한 강한 선호도를 보였으며, 여러 비표적 세포 집단에서는 제한적인 발현을 나타냈습니다. 제한적이라는 것은 발현이 전혀 없다는 것을 의미하지 않으며, 생쥐의 생체 분포만으로는 인간 세포 특이성을 확립할 수 없습니다.


결과 1: 일시적인 항-CD19 CAR 발현은 심각한 B세포 고갈을 유발했다


항-CD19 CAR mRNA를 정맥 주사한 후, NK 세포에서 CAR 발현은 6시간 이내에 감지되기 시작하여 약 24시간 후에 최고조에 달했고, 48시간까지 관찰되었으며, 항-CD19 시간 경과 실험에서 약 72시간 후에는 거의 감지되지 않았습니다.


그 짧은 발현 기간은 강력한 약리학적 효과를 나타내기에 충분했습니다. 순환하는 B 세포는 완전히 고갈되었습니다. 비장에서는 BiNKG2A 처리로 B 세포가 85% 이상 감소했으며, BiNKG2D는 보고된 실험에서 B 세포를 완전히 고갈시켰습니다.


이는 플랫폼에 탑재된 모든 페이로드가 동일한 72시간 프로필을 공유한다는 것을 의미하지는 않습니다. 또한 측정 가능한 CAR 단백질이 사라졌다고 해서 모든 하류 생물학적 효과가 그 순간에 멈춘다는 것을 의미하지도 않습니다. 보다 타당한 결론은 일시적인 CAR 발현이 표적 세포 구획에서 훨씬 더 오래 지속되는 변화를 유발할 수 있다는 것입니다.


결과 2: 항-CD3 CAR-NK는 자가면역 간염 마우스 모델을 개선했습니다.


연구진은 다음으로 자가면역 간염 모델에서 항-CD3 CAR과 마우스 IL-15 mRNA를 함께 투여했습니다. 동물들은 3일 간격으로 3회 투여받았습니다. 두 표적 LNP 모두 간 효소 수치를 정상화하고 조직 손상을 감소시켰으며, 특히 BiNKG2A는 간의 CD3 양성 T 세포를 거의 완전히 제거했습니다.


이는 T세포 표적 면역 재설정의 중요한 개념 증명이지만, 해석에는 주의가 필요합니다. 항-CD3 CAR은 자가 반응성 클론을 선택적으로 인식하지 않습니다. 모델에서 광범위한 CD3 양성 T세포 집단을 제거합니다. 따라서 이 전략을 임상에 적용하려면 제거 정도, 기간, 감염 위험, 면역 재구성, 그리고 광범위한 T세포 제거가 정당화될 수 있는 임상적 맥락을 신중하게 관리해야 합니다.


결과 3: NKG2A 표적 치료는 면역 체크포인트 억제와 약물 전달을 결합할 수 있습니다.


인간 CD19를 발현하도록 유전자 조작된 B16F10 흑색종 세포를 이용한 고형 종양 실험에서 가장 명확한 기전적 차이가 나타났습니다. 항-CD19 CAR 및 IL-15 mRNA를 탑재한 BiNKG2A-LNP는 BiNKG2D-LNP보다 종양 성장을 더 효과적으로 억제했습니다. 치료받은 쥐 대부분이 완전 관해를 보였으며, 보고된 추적 관찰 기간 100일까지 재발은 관찰되지 않았습니다.


BiNKG2A는 단순히 CAR-NK 세포의 수를 증가시킨 것이 아닙니다. 오히려 종양은 NK 세포 활성화 및 세포독성 기능 증가와 일치하는 증거를 보였습니다. NKG2A는 마우스에서는 Qa-1b, 사람에서는 HLA-E를 인식한 후 억제 신호를 전달하므로, 전달 과정에서 이 수용체에 결합하면 이러한 억제 축이 부분적으로 변화될 수 있습니다.


이는 상황에 따라 달라지는 설계 규칙을 시사합니다.


  • 억제 리간드 압력이 낮은 경우, NKG2D를 통한 형질전환을 극대화하는 것이 유리할 수 있습니다.

  • Qa-1b/HLA-E 비율이 높은 경우, NKG2A 표적 전달은 페이로드 진입과 체크포인트 조절을 결합할 수 있습니다.


이 실험은 여전히 유전자 조작 항원 모델에 불과합니다. B16F10 흑색종은 CD19를 임상적으로 의미 있는 고형 종양 표적으로 자연적으로 확립하지 않으며, 이 결과는 변형되지 않은 인간 흑색종에 대한 치료법을 입증하지 못합니다.


인간화 마우스 모델이 제공하는 이점은 무엇일까요?


인간 라지 림프종을 이식한 NSG-IL-15 마우스에서 BiNKG2D-LNP를 5회 투여한 결과, 인간 NK 세포의 약 63%와 인간 T 세포의 10% 미만에서 항-CD19 CAR 발현이 유도되었습니다. 치료받은 5마리 모두 완전 관해를 달성했습니다.


이 연구에서는 CD7 양성 CCRF-CEM T세포 백혈병도 테스트했습니다. 접종 전에 종양 세포에 인터페론 감마를 처리하여 HLA-E 발현을 증가시켜 NKG2A/HLA-E 가설을 검증하기에 적합한 모델을 만들었습니다. 인간에 최적화된 BiNKG2A-LNP를 이용한 항-CD7 CAR mRNA 전달은 두 번의 주사 후 빠른 종양 퇴행을 유도했으며, 5마리 중 3마리에서 완전 관해를 보여 해당 실험에서 NKG2D 표적 제형보다 우수한 효과를 나타냈습니다.


이 모델 세부 사항은 중요합니다. 결과는 HLA-E 발현이 높은 조건에서는 제안된 메커니즘을 뒷받침하지만, 선별되지 않은 모든 T세포 백혈병에서 동일한 이점이 있음을 입증하지는 못합니다.


인간화 실험은 해당 플랫폼이 생쥐 체내에서 기능적인 인간 CAR-NK 세포를 생성할 수 있음을 보여줍니다. 그러나 이러한 실험은 인간의 약물동태학, 생체 분포, 반복 투여 안전성 또는 임상적 효능을 확립하지는 못했습니다.


적응증 선택: 목표와 면역 기능을 일치시키세요


적응증 또는 전략

적합할 수 있는 이유

합리적인 섀시 또는 디자인

증거 경계

CD19 양성 B세포 백혈병/림프종

접근 가능한 계통 항원; B세포 무형성증을 모니터링하고 관리할 수 있습니다.

지속적인 확장이 필요할 때는 CAR-T 요법을, 더 짧은 치료 기간이나 동종 이식 프로필이 유리할 때는 CAR-NK 요법을 선택합니다.

체외에서 승인된 CAR-T 치료법이 존재합니다. 본 논문은 마우스 및 인간화 마우스 CAR-NK 치료법에 대한 근거만을 제시합니다.

BCMA 양성 다발성 골수종

검증된 형질세포 계통 표적

CAR-T 치료법은 임상적으로 성숙 단계에 접어들었으며, 생체 내 CAR-T 치료법은 초기 임상 시험 단계에 진입하고 있습니다.

이 NtLNP 논문에서 검증되지 않은 사항입니다.

CD3, CD5 또는 CD7 양성 T세포 악성종양

명확한 표적이지만, 기존의 CAR-T 치료법은 자기 자신이나 정상 T 세포를 공격할 수 있습니다.

CAR-NK는 각 항원에 대해 표적 발현 및 동족 살해를 평가합니다.

항-CD7 효능은 IFN-γ 유도 HLA-E-high 인간화 모델에서 입증되었습니다. 인간 NtLNP 데이터는 없습니다.

B세포 매개 자가면역 질환

B세포의 심각한 고갈은 병원성 면역 구획을 재설정할 수 있습니다.

일시적인 CD19/BCMA 생체 내 CAR은 불필요한 지속성 없이 충분한 재설정을 목표로 할 수 있습니다.

CAR-T 치료법에 대한 인체 내 신호는 존재하지만, 본 논문은 B세포 자가면역 모델에서 효능이 아닌 B세포 고갈을 보여주었다.

T세포 매개 자가면역 질환

병원성 T세포 집단은 직접적으로 제거할 수 있다.

일시적인 CAR-NK 치료는 노출 제어를 제공하고 CD3 표적 CAR-T 세포의 동족 살해를 방지할 수 있습니다.

해당 논문은 클론 선택적 치료법이 아닌 광범위한 CD3 양성 T세포 제거를 통해 마우스 간염 모델을 개선했습니다.

HLA-E-높음 종양

NKG2A/HLA-E는 NK 세포 기능을 억제할 수 있으며, 이는 바이오마커로서의 타당성을 제시합니다.

NKG2A 표적 CAR-NK 세포와 진정한 종양 항원 및 적절한 수송 설계의 결합

기전 및 전임상적 근거에만 해당하며, 고형 종양 실험에서는 유전자 조작된 CD19를 사용했습니다.


가장 유력한 초기 기회는 CAR-NK 세포주가 성공적인 CAR-T 치료제를 대체하는 적응증일 필요는 없습니다. 오히려 세포주가 특정 문제를 해결하는 환경, 예를 들어 CAR-T 제조를 복잡하게 만드는 T 세포 계열 표적, 일시적인 면역 재설정이 바람직한 질환, 또는 NKG2A/HLA-E 축이 의미 있는 억제 인자인 바이오마커 기반 종양 등이 해당될 수 있습니다. 이는 개발 가설일 뿐, 본 논문의 임상적 결론은 아닙니다.


아직 해결되지 않은 것은 무엇인가


1. 모든 효능 결과는 전임상 단계입니다.


치료받은 환자는 없었습니다. 인간화 마우스는 완전한 인간 면역 체계를 재현하지 못하며, NSG-IL-15 배경은 특히 인간 NK 세포 생존을 지원합니다.


2. 일시적인 효과는 안전성을 보장하는 동시에 투약 부담을 가중시킵니다.


단기 발현은 질병 조절에 도움이 될 수 있지만, 암이나 만성 면역 질환의 경우 반복 투여가 필요할 수 있습니다. 보고된 마우스 실험에서는 반복 투여가 내약성이 있는 것으로 나타났습니다. 항-scFv 항체 역가는 증가했지만, 연구진은 시험 기간 동안 유의미한 중화 효과는 관찰하지 못했습니다. 따라서 이는 인체에서 장기간 재투여가 가능하다는 것을 의미하지는 않습니다.


3. 체외 비교 대상이 완전히 일치하지 않았습니다.


인간화 림프종 실험에서 체외 CAR-NK 비교 대상에는 NtLNP를 통해 전달되는 인간 CAR에는 없는 IL-15/IL-15R-알파 보조 모듈이 포함되었습니다. 이 비교는 기존 CAR-NK 제품에 대한 임상적 비열등성 시험이 아니라 유용한 모델 벤치마크입니다.


4. NKG2A는 생물학적으로 활성이 있으며, 중립적인 전달 손잡이가 아닙니다.


면역관문 억제를 완화하면 기능이 향상될 수 있지만, 억제 수용체를 조작하면 NK 세포의 교육, 항상성 및 조직 특이적 행동에도 영향을 미칠 수 있습니다. 환자별 HLA-E 발현 및 NK 세포 하위 집단의 변이가 중요한 요소가 될 것입니다.


5. 번역은 제품 관리를 환자에게로 옮깁니다.


체외 제조는 주입 전에 세포 정체성, 형질전환, 용량, 생존력, 효능 및 방출 품질을 측정합니다. 체내 엔지니어링은 생체 분포, 수용체 존재량, 약물 노출 및 환자 생물학적 특성을 통해 이러한 변수들을 간접적으로 제어해야 합니다. 제조 공장을 없앤다고 해서 제조 위험이 완전히 사라지는 것은 아니며, 제품 생산의 일부를 체내로 옮기는 것일 뿐입니다.


저자들은 사노피(구 트랜슬레이트 바이오), 마블 암 나노의학 센터, 그리고 미국 국립암연구소(NCI) 핵심 연구비 지원, 특허 출원 및 관련 이해 충돌 사항을 보고했습니다. 이러한 공개 사항은 실험의 타당성을 부정하는 것은 아니지만, 해당 연구 결과는 임상 적용 가능성 측면에서 고려되어야 합니다.


학계와 산업계의 입장은 어떠한가


생체 내 CAR 분야는 세포 및 전달 방식에 따라 각기 다른 속도로 발전하고 있습니다.


학술 연구는 초기 DNA 나노 운반체 및 CD5 표적 mRNA-LNP 접근법에서 시작하여, 외피 전달체, 표적 바이러스 벡터, 부위 특이적 유전체 통합, 활성화 반응성 LNP를 거쳐 현재는 NK 세포 선택적 리간드 표적 나노입자에 이르기까지 발전해 왔습니다. 이제 질문은 "생체 내에서 CAR 세포를 생성할 수 있을까?"에서 "세포의 정체성, 발현 지속 시간, 유전체 위치, 기능적 상태 및 반복 투여를 제어할 수 있을까?"로 바뀌었습니다.


제약 업계는 생체 내 CAR-T 치료 분야에서 가장 앞서 나가고 있습니다. 여러 바이러스 및 비바이러스성 프로그램이 1상 임상시험에 진입했거나 진입 직전 단계에 있습니다. NK 세포 생물학과의 관련성을 보여주는 예로는 인터리우스(Interius)의 INT2104가 있습니다. INT2104는 CD7을 표적으로 하는 렌티바이러스 벡터로, 생체 내에서 항-CD20 CAR-T 세포와 CAR-NK 세포를 생성하도록 설계되었습니다. 이 벡터는 1상 INVISE 임상시험(NCT06539338)에서 연구되고 있으며, 2026년 9월 8일 등록 업데이트 당시에는 목표 등록 환자 수 10명으로 진행 중이었으나 현재는 신규 환자 모집이 중단된 상태였습니다. 그러나 INT2104는 NK 세포 선택적 치료제가 아니며, 공개적으로 이용 가능한 인체 임상 데이터에서도 CAR-NK 세포의 독립적인 기여도를 명확히 구분해낼 수는 없습니다.


비바이러스성, NK 세포 선택적 생체 내 CAR-NK 치료법은 여전히 전임상 단계에 머물러 있습니다. 반면, 체외 제대혈, 공여자 유래 및 iPSC 유래 CAR-NK 제품은 인체 임상 경험을 축적해 왔지만, 환자 체내에서 직접 유전자 조작을 하는 것이 아니라 기성품 세포를 제조하는 방식에 기반합니다.


2026년 10월 17일 기준 가장 정확한 요약은 다음과 같습니다.


생체 내 CAR-T 치료법은 여러 플랫폼에서 초기 임상 검증 단계에 도달했습니다. 생체 내 CAR-NK 치료법은 비바이러스성, NK 세포 선택적 전임상 개념 증명을 달성했지만, 아직 인체 검증은 이루어지지 않았습니다.

생체 내 NK 선택적 비바이러스성 CAR-NK와 생체 내 CAR-T의 증거 성숙도 비교
NK세포 선택적 비바이러스 in vivo CAR-NK는 아직 전임상 단계지만, 여러 in vivo CAR-T 플랫폼은 이미 인체 시험에 들어갔다. LuTra Studio

최초의 생체 내 CAR-T 임상 사례를 통해 현실을 직시해 봅시다.


생체 내 BCMA CAR-T 후보 물질인 ESO-T01로 치료받은 4명의 환자에 대한 장기 추적 관찰 결과는 작용 기전과 지속적인 치료 효과 사이의 격차를 보여줍니다. 4명 모두 객관적 반응을 보였지만, 무진행 생존 기간 중앙값은 4개월에 불과했습니다. 한 환자는 15개월 동안 엄격한 완전 관해를 유지했고, 나머지 3명은 재발 또는 질병 진행을 경험했습니다.


그 결과는 플랫폼 자체를 부정하는 것이 아닙니다. 오히려 다음 단계의 증거 기준을 명확히 하는 것입니다. CAR 양성 세포를 생성하는 것은 작용 기전을 입증하는 것이고, 재현 가능한 세포 적합성, 이동, 지속성, 안전성 및 환자에게 지속적인 효과를 제공하는 것은 치료법을 입증하는 것입니다.


CAR-NK 관련 논문에도 동일한 기준을 적용해야 합니다. NK 세포 형질전환율이 80%에 육박하는 것은 기술적으로는 놀라운 수치이지만, 임상적으로 중요한 질문은 이러한 세포들이 다양한 질병 환경에서 어떤 작용을 하는지, 그 효과가 얼마나 지속되는지, 그리고 재투여 시에도 효과적이고 내약성이 양호한지 여부입니다.


이 논문이 바꾸는 점


첫째, 이 연구는 신뢰할 수 있는 NK 세포 선택적 전달 전략을 통해 생체 내 CAR 적용 범위를 T 세포를 넘어 확장합니다.


둘째, 이는 전달 효율성이 유일한 최적화 지표가 될 수 없는 이유를 보여줍니다. 가장 우수한 성능을 보이는 수용체는 단순히 가장 많은 CAR 양성 세포를 생성하는 수용체가 아니라, 흡수와 유익한 면역 신호 전달을 모두 갖춘 수용체일 수 있습니다.


셋째, 이는 일시적이라는 것이 생물학적으로 약하다는 것을 의미하지 않는다는 점을 강조합니다. 짧은 기간 동안 CAR 발현을 지속하면 표적 세포 구획이 크게 고갈될 수 있습니다. 이것이 장점인지 한계인지는 적응증에 따라 다릅니다.


마지막으로, 이는 플랫폼 모듈화에 대한 기준을 높입니다. 성숙한 생체 내 CAR 치료제는 다음과 같은 사항들을 공동으로 최적화해야 합니다.


  • 면역세포 표적화 리간드;

  • 벡터 또는 LNP 구성;

  • CAR 아키텍처 및 지원 페이로드;

  • 수용체 신호 전달 생물학;

  • 조직 생체 분포;

  • 발현 지속 시간 및 재투여 전략; 그리고

  • 질병 특이적 약물동태학적 평가 지표.


결론: 생체 내 제조에서 생체 내 면역 설계까지


생체 내 CAR 연구의 첫 번째 질문은 환자 자신이 CAR 세포 생산 공장이 될 수 있는지 여부였습니다. 이 연구는 그 공장이 체내로 이동한 후 어떤 일이 일어나는지, 즉 세포를 선택하고, 상태를 조절하고, 생산된 세포의 존속 기간을 정의할 수 있는지에 대한 질문을 던집니다.


답은 '그렇다'인 것처럼 보이기 시작하지만, 현재까지는 전임상 모델에서만 그렇습니다.


이번 네이처 바이오테크놀로지 논문은 표적 수용체를 전달 표지자가 아닌 약리학적 특성의 일부로 다룬다는 점에서 중요합니다. NKG2D는 세포 내 유입을 촉진할 수 있고, NKG2A는 흡수율은 낮지만 저해 리간드가 풍부한 환경에서 더 큰 기능적 이점을 제공할 수 있습니다. 이는 의미 있는 개념적 진전입니다.


진정한 성과는 CAR 양성 NK 세포의 높은 비율이라는 단일 목표를 달성하는 데 있는 것이 아닙니다. 예측 가능한 특이성, 허용 가능한 독성, 충분한 조직 활성, 반복 가능한 투여, 그리고 지속적인 임상적 이점을 갖춘, 다양한 환자에게서 의도한 세포 제품을 생성할 수 있는 능력이야말로 진정한 성과가 될 것입니다.


만약 그것이 실현된다면, 생체 내 CAR은 CAR-T 또는 CAR-NK의 제조 방식뿐만 아니라 세포 치료제 제품의 정의 자체를 바꿀 것입니다.


생체 내 CAR-NK FAQ


생체 내 CAR-NK란 무엇인가요?


생체 내 CAR-NK는 CAR 유전자를 체내 NK 세포에 직접 전달하여 환자 자신의 NK 세포가 CAR를 일시적 또는 지속적으로 발현할 수 있도록 합니다. 본 연구에서 사용된 NtLNP 플랫폼은 mRNA를 이용하므로 CAR 발현은 일시적이며 유전자 통합이 불가능합니다.


생체 내 CAR-NK 세포가 임상 시험 단계에 진입했습니까?


2026년 10월 17일 현재, NK 세포 선택적 비바이러스성 생체 내 CAR-NK 치료법은 여전히 전임상 단계에 있습니다. INT2104는 1상 임상시험 단계에 있지만, CAR-T 세포와 CAR-NK 세포를 모두 생성하므로 NK 세포 선택적 인체 검증에는 해당하지 않습니다.


NKG2D 및 NKG2A 표적 LNP는 어떻게 다른가?


본 연구에서 NKG2D 표적 LNP는 더 높은 NK 세포 형질전환율을 나타냈다. NKG2A 표적 LNP는 CAR 양성 NK 세포 생성량은 더 적었지만, NKG2A 리간드가 풍부한 종양에서 억제 신호 전달을 변화시켜 기능을 향상시킬 수 있을 것으로 보인다. 이러한 해석은 상황에 따라 달라질 수 있으며, 아직 전임상 연구 단계에 머물러 있다.


LuTra Studio 소개


LuTra Studio는 과학 중심의 팀이 복잡한 기술을 실행 가능한 개발, CMC, 시장 포지셔닝 및 파트너십 전략으로 전환할 수 있도록 지원합니다. 저희는 생체 내 세포 공학을 단순히 제조 워크플로우 단축을 위해서만 활용하는 것이 아니라, 전달, 세포 생물학, 제품 관리 및 임상 개발 전반에 걸쳐 위험을 재분배할 수 있기 때문에 중요하게 생각합니다.


참고 자료


  1. Chen Y, Monkovic J, Mughal H, et al. 리간드 유도 지질 나노입자를 이용한 면역요법을 위한 CAR 자연 살해 세포의 생체 내 엔지니어링 . Nature Biotechnology . 2026.

  2. Smith TT, Stephan SB, Moffett HF, et al. 합성 DNA 나노 운반체를 이용한 백혈병 특이적 T 세포의 현장 프로그래밍 . Nature Nanotechnology . 2017.

  3. Rurik JG, Tombacz I, Yadegari A, et al. 심장 손상을 치료하기 위해 생체 내에서 생산된 CAR T 세포 . Science . 2022.

  4. Hamilton JR, Chen E, Perez BS, et al. 피막형 전달체를 이용한 생체 내 인간 T 세포 공학 . Nature Biotechnology . 2024.

  5. Hunter TL 외. 암 및 자가면역 질환 치료를 위한 생체 내 CAR T 세포 생성 . Science . 2025.

  6. Wang Q, Xiao ZX, Zheng X, et al. 난치성 전신성 루푸스에 대한 생체 내 CD19 CAR T-세포 치료 . 뉴잉글랜드 의학 저널 . 2025.

  7. 생체 내 부위 특이적 유전자 조작을 통한 T세포 재프로그래밍 . 네이처 . 2026.

  8. Xu J, Liu L, Xie W, et al. 재발/불응성 다발성 골수종에서 생체 내 BCMA CAR-T 치료의 장기 추적 관찰 . Nature Medicine . 2026.

  9. 길리어드 임상시험. INT2104의 INVISE 1상 연구, NCT06539338 . 2026년 10월 17일 접속.

  10. Dagher OK, Posey AD Jr. CAR T 및 CAR NK 세포 암 치료법의 갈림길 . Nature Immunology . 2023.

  11. Alrehaili M, et al. 고형 종양에서의 CAR-대식세포: 가능성, 진전 및 전망 . npj Precision Oncology . 2025.

  12. Ferreira LMR, Muller YD, Bluestone JA, Tang Q. 차세대 조절 T 세포 치료법 . Nature Reviews Drug Discovery . 2019;18:749–769.

  13. 암 치료를 위한 유전자 조작 및 병용 요법을 통해 감마-델타 T 세포의 잠재력을 활용합니다 . Nature Communications . 2026.

  14. 국립암연구소. CAR T 세포: 암 치료를 위한 면역 세포 조작 . 2026년 10월 17일 접속.

  15. 미국 식품의약국(FDA). 승인된 세포 및 유전자 치료 제품 . 2026년 10월 17일 접속.

  16. 암 치료를 위한 CAR-T 세포 요법: 현재의 과제와 미래 방향 . 신호 전달 및 표적 치료 . 2025.


약어


  • BCMA: B세포 성숙 항원

  • CAR: 키메라 항원 수용체

  • CMC: 화학, 제조 및 관리

  • CRS: 사이토카인 방출 증후군

  • GvHD: 이식편대숙주질환

  • HLA-E: 인간 백혈구 항원 E

  • ICANS: 면역 효과 세포 관련 신경독성 증후군

  • LNP: 지질 나노입자

  • MHC: 주요 조직적합성 복합체

  • NK 세포: 자연 살해 세포

  • NtLNP: NK 세포 표적 지질 나노입자

  • PFS: 무진행 생존기간

  • scFv: 단일 사슬 가변 단편

  • sCR: 엄격한 완전 응답

  • TCR: T세포 수용체


댓글


bottom of page